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Embryons au stade 3 vésicules

On peut noter que le prosencéphale a déjà commencé à se développer chez l’embryon de poulet (on observe deux vésicules optiques latérales en formation). De même, on peut s’apercevoir ici que le rhombencéphale présente une segmentation. A : antérieur, P : postérieur, D : dorsal, V : ventral.

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Embryons au stade 3 vésicules
Représentation schématique de l’évolution des vésicules céphaliques au cours de l’embryogenèse

Le tube neural est représenté selon l’axe antéro-postérieur (A – P). La vésicule initiale (à peine observable in vivo) donne naissance à trois vésicules : le prosencéphale (antérieur), le mésencéphale (moyen), et le rhombencéphale (postérieur). Le prosencéphale se divise ensuite en un télencéphale a...

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Représentation schématique de l’évolution des vésicules céphaliques au cours de l’embryogenèse
Neurula d’Amphibien

Les bourrelets neuraux, conduisant à la formation du tube neural, sont nettement visibles.
A : antérieur, P : postérieur.

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Neurula d’Amphibien
Embryon d’Amphibien au stade bourgeon caudal

Suite à la gastrulation et à la neurulation, les différents feuillets se sont mis en place, aboutissant au plan d’organisation de l’animal. Le neuroderme est en position dorsale, le long de l’axe antéro-postérieur. A : antérieur, P : postérieur, D : dorsal, V : ventral.

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Embryon d’Amphibien au stade bourgeon caudal
 Carte des territoires présomptifs d’un embryon d’Amphibien (pleurodèle) au stade jeune gastrula

La partie dorsale du neurectoderme correspond au neuroderme, qui donnera l’ensemble des structures nerveuses. L’ectoderme donnera les structures épidermiques (peau, etc.). Le mésoderme donnera essentiellement les tissus musculaires, les reins. Enfin, l’endoderme sera à l’origine du tube digestif et ...

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Carte des territoires présomptifs d’un embryon d’Amphibien (pleurodèle) au stade jeune gastrula
Electrophorèse ADN agarose négatif
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Electrophorèse ADN agarose négatif
Détermination graphique de la taille de fragments de restriction
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Détermination graphique de la taille de fragments de restriction
Distance de migration en fonction du logarithme de la taille des fragments d'ADN
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Distance de migration en fonction du logarithme de la taille des fragments d'ADN
Distance de migration en fonction de la taille des fragments d'ADN
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Distance de migration en fonction de la taille des fragments d'ADN
Profils densitométriques (densité et couleurs RVB) superposés à la piste correspondante du gel

En bas de l'image, la piste 1 : marqueurs de taille de l'ADN [pUC Mix, Promega]

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Profils densitométriques (densité et couleurs RVB) superposés à la piste correspondante du gel
Images en négatif des gels

A gauche : minigel 8 x 6,5 cm
A doite : midigel 15 x 10 cm.

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Images en négatif des gels
Coloration des gels

A gauche : minigel 8 x 6,5 cm coloré par le bleu de Nile.
A droite : gel 15 x 10 cm coloré par le bleu de Nile.

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Coloration des gels
Electrophorèse d'ADN sur gel d'agarose 15 x 10 cm (15 puits)

Noter la migration du colorant de charge de la cathode vers l'anode.

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Electrophorèse d'ADN sur gel d'agarose 15 x 10 cm (15 puits)
Préparation du gel d'agarose

A gauche : la solution d'agarose (tampon TBE et agarose à raison de 0,8 g d'agarose pour 100 mL de tampon) dans son flacon de conservation.
A droite : la minicuve pour gel 8 x 6,5 cm, avec le peigne et les joints de coulage mis en place.

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Préparation du gel d'agarose
Détail de la patte ectopique de Tribolium mutant antennapedia

Vue ventrale à gauche et dorsale à droite. Noter la déformation plus ou moins marquée de certains articles de la patte.

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Détail de la patte ectopique de Tribolium mutant antennapedia
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